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充满想象力的恒温扩增技术丨RPA、RCA、SDA、HDA

2021-12-14 10:06| 编辑: 归去来兮| 查看: 10476| 评论: 0|来源: IVD技术咖

摘要: 相比变温技术PCR,恒温扩增技术更加多种多样,其所用酶的多样性,也就决定了恒温扩增原理的千差万别。即使这类方法统称为恒温扩增技术,但实际上每种方法的最佳反应温度也是各有不同的。不过,今天跟大家介绍的几种 ...


相比变温技术PCR,恒温扩增技术更加多种多样,其所用酶的多样性,也就决定了恒温扩增原理的千差万别。即使这类方法统称为恒温扩增技术,但实际上每种方法的最佳反应温度也是各有不同的。不过,今天跟大家介绍的几种恒温扩增技术,则有一个共同的特点,那就是它们最开始的最适反应温度均为37℃左右。


01

重组酶聚合酶扩增技术(RPA)




1.原理介绍

重组酶聚合酶扩增技术(Recombinase Polymerase Amplification, RPA)是以T4噬菌体核酸复制机制为原理,通过重组酶蛋白(T4 uvs X)、单链结合蛋白(T4 gp32)和DNA聚合酶(Bsu)的作用,在体外完成核酸的恒温扩增反应。其反应原理如图1A所示:①在ATP参与下,重组酶T4 uvsX分别与上、下游引物结合形成重组酶-引物复合体;②该复合体扫描双链DNA模板,并识别与引物同源的靶序列;③定位至同源靶序列后,重组酶解开双链结构,并促使引物与模板进行链交换,形成D环结构,同时单链结合蛋白T4 gp32结合到被置换出的单链DNA上,稳定D环结构;④ATP水解供应能量,改变重组酶-引物复合体构象,重组酶解离暴露出引物的3’端,DNA聚合酶Bsu结合至引物上,启动DNA扩增;⑤DNA聚合酶延伸过程中,置换出的DNA单链与单链结合蛋白结合,稳定单链结构,上、下游引物同步反应,最终形成一个完整的扩增子。



RPA体系中还含有辅助因子(T4 uvs Y)和拥挤剂(Carbowax20M)等成分,可调节重组酶-引物复合体解离及重新结合的可逆反应过程,使反应朝更有利于RPA的方向进行(如图1B所示)。如果在RPA体系中加入逆转录酶,还可用于RNA的检测。另外,在RPA体系中加入荧光探针和核酸酶,便可进行实时检测;若结合侧向层析技术,则可实现可视化检测。根据荧光探针设计上的差异及对应核酸酶的不同,RPA探针一般分为Exo探针、Fpg探针和LF探针,其各自的检测原理如图2所示:①Exo探针配合核酸外切酶(exonuclease, exo)可用于实时检测,该探针内部引入一个碱基模拟物四氢呋喃(etrahydrofuran abasic-site mimic, THF)的修饰位点,并在位点临近两侧分别偶联荧光基团和淬灭基团,当探针同靶序列杂交形成双链DNA时,exo识别四氢呋喃修饰位点,对该位置进行剪切,使得荧光基团和淬灭基团分离,从而产生荧光(图2A);②Fpg探针配合核酸酶fpg也可进行实时检测,该探针5’端修饰淬灭基团,并在淬灭基团的临近位置,将荧光基团以C-O-C(dR基团)形式连接在探针碱基上,当探针同靶序列杂交形成双链DNA时,fpg识别dR基团,对该位置进行剪切,释放荧光基团并产生荧光(图2B);③LP探针配合核酸内切酶(如nfo),以及侧向层析技术,则可实现RPA检测结果的可视化,该探针5’端修饰荧光基团,探针内部同样引入四氢呋喃(THF)修饰位点,当探针同靶序列杂交形成双链DNA时,nfo识别四氢呋喃脱修饰位点,对该位置进行剪切并产生游离的3’-OH,可作为引物,继续延伸扩增,同时经生物素修饰的下游引物同步扩增,最后形成两端分别带有荧光基团和生物素标记的扩增产物,该产物结合侧向层析技术,则可通过肉眼观察到检测结果(图2C)。该三种探针的3’端均需进行封闭,以防止探针延伸,若采用不同荧光基团的探针,则可实现多重检测。



2. 技术特点

(1)RPA为多酶反应体系,需多个酶的协作才能完成扩增,不同厂家基于关键酶的来源差别,建立了各自的扩增技术,如重组酶介导的扩增技术(Recombinase-aid Amplification, RAA)和酶促重组等温扩增技术(Enzymatic Recombinase Amplification, ERA),而从原理上看,此三种技术是类似的扩增方法;

(2)RPA可于25~42℃反应,无须热循环,最适反应温度为37℃左右,该温度位于CRISPR/Cas系统的反应温度范围内,而两者的结合也推进了下一代分子诊断技术的发展(传说中的CRISPR/Cas分子诊断技术到底是个啥?);(3)反应速度快,5~30分钟即可达到检出水平,适用于POCT领域;(4)扩增引物长度为30~35bp,荧光探针长度为46~52bp,相比其他核酸检测技术,引物和探针均较长,在测试中需要更多的摸索和筛选,同时较长的引物长度也限制了RPA对短序列核酸的检测。


3. 产品应用

(1)RPA是TwistDx公司的专利技术,后来雅培公司通过收购获得了该技术专利,其以RPA为基础的TwistAmp®核酸扩增产品,涵盖了DNA/RNA检测、实时检测/终点法检测,种类齐全,其提供的冻干试剂,无需冷链保存和运输。

(2)RAA是国内厂家的专利技术,主要有杭州众测生物科技有限公司和江苏省奇天基因公司在开发相应的检测试剂及设备,其中杭州众测生物科技有限公司结合RAA技术和CRISPR免疫层析法,开发出了新冠核酸检测试剂,并获得了NMPA注册证。(3)ERA则是苏州先达基因科技有限公司申请的专利技术,该公司创立于2017年,基于其核心技术开发的产品涵盖食品安全、畜牧水产、分子诊断等领域。


02

滚环核酸扩增技术(RCA)




1. 原理介绍

滚环核酸扩增技术(Rolling Circle Amplification , RCA)是模拟自然界微生物环状DNA滚环复制过程,建立起来的一种核酸检测方法。所用DNA聚合酶是具有强链置换活性的φ29 DNA聚合酶,扩增方法可分为线性扩增和指数扩增,其反应原理如图3所示:①对于环状模板,加入与模板互补的单引物,在引物和模板杂交后,即可启动滚环扩增,合成产物为重复的线形单链DNA序列,该过程为线性扩增(图3A);②对于线性靶标序列,则可设计锁环探针(Padlock probe),使其两端与靶标序列互补配对,并在连接酶作用下,将锁环探针连接成环,该环状序列即可作为模板进行滚环扩增(图3B);③在单引物引发的线性扩增基础上,加入一条反向引物序列,该反向引物与单链DNA扩增产物结合,并在DNA聚合酶作用下进行复制,由于φ29 DNA聚合酶的链置换功能,因此可形成多分支扩增反应,使得产物呈指数递增(图3C)。



2. 技术特点
(1)RCA检测模板需为单链环状结构,若样品不符合要求,则需进行变性退火或环化处理;(2)线性扩增产物为大量与环状模板互补的重复线形单链DNA,可与探针直接结合实现信号放大,且连续的扩增产物可避免信号扩散,适用于原位杂交检测;(3)线性RCA的效率可达到105倍,指数RCA的效率可达到109倍,可实现单分子检测水平;(4)检测RNA时无需预先进行RNA逆转录,只需保证探针的识别序列和靶序列互补,即可进行RCA检测;
        (5)基于锁式探针5’端与3’端的两段识别序列,需与靶序列互补配对的原则,该方法可用于SNP的检测。


3. 产品应用        RCA存在的背景信号干扰问题,在一定程度上限制了其在分子诊断上的应用。其目前应用价值主要体现在DNA测序模板的制备上,如Qiagen公司和GE Healthcare公司基于RCA开发的测序模板扩增试剂盒,可产生用于DNA测序的高质量模板。


03

链替代扩增技术(SDA)




三、链替代扩增技术(SDA)1. 原理介绍

链替代扩增技术(Strand Displacement Amplification, SDA)是依赖于限制性内切酶(如HincII)对DNA酶切位点的切割,以及DNA聚合酶(如exo- Klenow)在切口位置的延伸,并置换下游DNA片段的一种恒温扩增技术。该技术在建立过程中,更新迭代了一次。第一代的SDA反应原理如图4所示:①第一代SDA使用1对含有限制性内切酶识别序列(如HincII识别5’-GTT//GAC-3’)的引物进行扩增,在扩增前需先用限制性内切酶对模板进行切割,再通过加热变性退火与引物结合;②在无外切酶活性的DNA聚合酶(如exo- Klenow)作用下,延伸形成DNA双链,并产生可被限制性内切酶识别的酶切位点,但由于反应体系中加入了一种化学修饰的dNTP(如dATPαS),因此HincII只会切割酶切位点没被修饰的DNA链(如5’-GTT//GAC-3’或5’-GTT//GsAC-3’),而另一条酶切位点含有半硫代磷酸化的DNA链则不会被切开,因此只是形成切口,并暴露出3’端,可作为DNA聚合酶延伸的引物,继续启动扩增,扩增产物再次形成可被识别的酶切位点,且为半修饰状态;③另外,DNA聚合酶延伸过程中将置换出下游DNA单链,被置换出的DNA单链可与引物结合启动扩增,同样形成含有半修饰酶切位点的DNA双链,限制性核酸内切酶再次识别酶切位点并切割;④由此,限制性内切酶形成缺口、DNA聚合酶启动扩增与链置换反应循环进行, 从而形成循环反应过程。



第一代SDA反应前,需要采用限制性内切酶对目标DNA进行酶切,形成上下游可用于扩增的模板,这不仅增加了操作难度,也限制了对靶标序列的选择范围。第二代SDA则对此进行了改进,简化了操作过程,将原来反应体系中的1对引物,改为2对引物,其中外侧引物(B1和B2)为常规特异性引物,内侧引物(S1、S2)与第一代SDA一样,5’端含有限制性内切酶识别序列,其反应原理如图5所示:①首先靶序列经加热变性,在退火过程中,内侧引物(S1、S2)和外侧引物(B1和B2)结合至靶序列启动扩增,其中外侧引物引发的合成链,可将内侧引物的合成链置换出来;②该单链DNA继续与内侧引物结合延伸扩增,最后将形成含有酶切位点的双链DNA分子,此为进入SDA循环扩增的主要模板;③限制性内切酶识别酶切位点,切割酶切位点无修饰的DNA链,形成切口,DNA聚合酶从切口处延伸,并置换出下游DNA单链;④如此形成的循环过程与第一代SDA类似。



2. 技术特点

(1)SDA在等温扩增之前需要一个加热变性打开双链的步骤,若所用酶不耐热,则需分步添加;(2)SDA反应体系中需通过添加经化学修饰的核苷酸,确保限制性内切酶仅在酶切位点形成切口,其中加入的非标准核苷酸将降低扩增效率;(3)与SDA类似的恒温扩增技术还有切口酶扩增反应(Nicking Enzyme Amplification Reaction, NEAR),该方法所用内切酶为切刻内切酶,只水解双链 DNA 中的一条链,对 DNA 链进行切刻而不是切断,从而形成切口,因此体系中可使用正常的核苷酸进行扩增,且该方法所用酶具有热稳定性,反应温度可达到54℃左右,该技术最为人所知的产品,就是雅培ID Now平台的检测试剂。


3. 产品应用
BD(Becton, Dickinson and Company)开发的Probe Tec Qx检验试剂即采用了SDA技术,用于检测沙眼衣原体、淋球菌等,结合BD Viper LT系统,可实现自动化操作。


04

解旋酶依赖性扩增技术(HDA)




四、解旋酶依赖性扩增技术(HDA)1. 原理介绍
解旋酶依赖性扩增技术(Helicase-Dependent Amplification, HDA) 是模拟动物体内DNA复制机制,发明的一种体外恒温扩增技术。利用解旋酶、单链DNA结合蛋白(SSB)等组分,替代了PCR过程中通过变温实行变性-退火-延伸的热循环过程,其反应原理如图6所示:①解旋酶解开DNA双链结构,同时单链结合蛋白结合至单链上,使单链保持稳定状态;②引物结合至单链靶序列上,在DNA聚合酶的作用下合成新的双链DNA;③新合成的双链DNA可作为模板,重复上述步骤,进入下一轮扩增。


2. 技术特点

(1)与其它恒温扩增技术相比,扩增过程简单,简直就是PCR的恒温版本;(2)扩增过程需要解旋酶和聚合酶协同作用,需平衡两者的反应速度,使得反应趋向于合成新链;(3)HDA最开始的反应温度为37℃,后来通过对关键组分的筛选调整和基因工程改造,最后形成了热稳定HDA,反应温度可达到65℃左右。


3. 产品应用
Quidel公司基于HDA方法开发了一系列产品,其中AmpliVue系列产品将HDA技术与免疫层析方法结合,检测结果可肉眼判读;Solana系列产品则采用荧光方法对HDA产物进行检测。


05

总结与思考




37℃,是人类触手可及的温度,基于该反应温度建立的分子检测方法,在未来的应用上是最具想象力的。试想一下,如果一个分子检测产品,用手捂一捂便能知道结果……当然,一个理想的分子检测产品,不是仅靠优化核酸扩增方法就能实现的,还需要考虑样本前处理流程、检测结果的呈现方式、产品使用前后的便捷性和安全性等。而37℃左右的反应温度,至少从能耗上看,对反应设备的要求是很低的,在产品性能达到极致的状态下,连装有电池的供能小装置都不需要。实际上,从一些扩增技术的发展历程看,过去的趋势是这样的:当研究者在中低温条件下,建立起一种核酸体外扩增方法后,可通过寻找热稳定的组分改进反应体系,进一步提升该技术的应用价值。因为较高的反应温度,一方面有利于打开核酸的二级结构,便于启动扩增,另一方面也可以提高反应特异性,另外在很多应用场景中,电加热是很容易获取的。不过,随着更多应用场景的开拓,技术的迭代策略是否会发生改变,未来的恒温反应温度是否会趋近于体温,是值得我们关注与期待的。现阶段,它给我们留了很大的想象空间。

参考资料

[1] Piepenburg O, Williams CH, Stemple DL, Armes NA. DNA detection using recombination proteins. PLoS Biol. 2006 Jul;4(7):e204.[2] Babu B, Ochoa-Corona FM, Paret ML. Recombinase polymerase amplification applied to plant virus detection and potential implications. Anal Biochem. 2018 Apr 1;546:72-77.[3] Goo NI, Kim DE. Rolling circle amplification as isothermal gene amplification in molecular diagnostics. Biochip J. 2016;10(4):262-271.[4] Yan L, Zhou J, Zheng Y, Gamson AS, Roembke BT, Nakayama S, Sintim HO. Isothermal amplified detection of DNA and RNA. Mol Biosyst. 2014 May;10(5):970-1003. [5] Zeng L , Mukama O , Lu X , et al. Strand Displacement Amplification for Multiplex Detection of Nucleic Acids[M]. 2018.[6] Barreda-García S, Miranda-Castro R, de-Los-Santos-álvarez N, Miranda-Ordieres AJ, Lobo-Castañón MJ. Helicase-dependent isothermal amplification: a novel tool in the development of molecular-based analytical systems for rapid pathogen detection. Anal Bioanal Chem. 2018 Jan;410(3):679-693. 


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