立即注册找回密码

QQ登录

只需一步,快速开始

微信登录

微信扫一扫,快速登录

手机动态码快速登录

手机号快速注册登录

搜索

图文播报

查看: 146|回复: 0

[分享] 📍 Western Blot条带常见问题总结!解决你的实验困扰,精准解析每个问题!

[复制链接]
发表于 2025-5-28 08:48 | 显示全部楼层 |阅读模式

登陆有奖并可浏览互动!

您需要 登录 才可以下载或查看,没有账号?立即注册 微信登录 手机动态码快速登录

×
Western Blot实验中遇到条带问题?不慌,这里有你最常见问题的解决方案!


     01背景脏
原因1:洗膜不充分,洗膜时间不够解决办法1:至少5minX4次或10minX3次,最好是15minX3次
原因2:封闭不彻底
解决办法2:选用合适的5%脱脂奶粉用tbst配制或用BSA(磷酸化指标)封闭1小时,可回收利用,但不要用太多次和放太久。也可选用无蛋白快速封闭液封闭10-15分钟
原因3:抗体浓度不合适
解决方法3:一抗二抗按说明书使用,选择合适的稀释倍数
原因4:印迹膜被污染
解决方法4:全程戴手套,防止污染,剪膜画线时注意不要画到膜上,tbst多洗一会儿原因5:转膜时膜上有气泡解决方法5:转膜时将气泡排除干净


      02高背景
原因1:-二抗浓度过高解决方法1:稀释抗体浓度原因2:抗体失效
解决方法2:更换新的抗体
原因3:膜的问题
解决方法3:防止膜过程中干燥,使用nc膜,使用干
净镊子并戴手套操作
原因4:洗膜不充分
解决方法4:适当增加洗膜时间和次数,确保充分震荡,并保证抗体充分覆盖膜表面
原因5:曝光过度
解决方法5:缩短曝光时间原因6:转膜液封闭液不新鲜或污染解决方法6:现配现用


       03非特异性条带较多
原因1:抗体浓度过高,上样量过高
解决方法1:降低上样量,提高一抗稀释浓度原因2:抗体未纯化
解决方法2:使用单克隆抗体
原因3:转膜强度太强
解决方法3:降低转膜强度(时间和电流)原因4:抗体与蛋白非特异性结合
解决方法4:更换抗体
原因5:封闭不完全
解决方法5:增加封闭液中蛋白浓度
原因6:细胞传代次数过多,导致蛋白表达模式分化解决方法6:选择原代或传代少的细胞株,和现在的细胞株一起做参考


        04条带反白
原因1:一抗浓度过高,导致底物消耗过快解决方法1:稀释一抗浓度原因2:化学发光液灵敏度太高解决方法2:减少曝光时间和选择合适的化学发光液


       05条带未完全显示
原因1:上样量不够、样本失效解决方法1:增加上样量,换一批样本原因2:转膜时没夹紧,转膜没转上解决方法2:更换转膜槽


      06条带扭曲,不平整
原因1:插拔梳子时,电泳梳子形成的泳道不平整解决方法1:用注射针拨正泳道原因2:凝胶制备不均一
解决方法2:选择合适的制胶试剂盒原因3:浓缩胶电压偏高,导致浓缩效果不太好
解决方法3:降低电泳电压原因4:样本有不溶性颗粒或核酸污染解决方法4:制备样本时离心要充分,去除杂质。实验器材需整洁

原文地址:https://zhuanlan.zhihu.com/p/12227315856
楼主热帖
回复

使用道具 举报

发表回复

您需要登录后才可以回帖 登录 | 立即注册 微信登录 手机动态码快速登录

本版积分规则

关闭

官方推荐 上一条 /3 下一条

快速回复 返回列表 客服中心 搜索 官方QQ群 洽谈合作
快速回复返回顶部 返回列表