可靠的传染病诊断对于疫情监测、临床决策和疫情应对至关重要。目前的核酸诊断技术在分析性能、速度、成本和可及性之间长期存在权衡取舍,尤其是在资源匮乏的检测环境中。等温扩增技术可解决热循环依赖,LAMP、HDA、RPA等方法都可以在恒温条件下扩增核酸。其中,RPA的反应温度相对较低,通常在30–42°C,更接近POCT应用需求。但RPA也有自己的问题,它通常需要30–36 nt的较长引物,低于约30 nt时扩增效率明显下降,而较长引物在低温下又更容易产生背景扩增和低信噪比。 近日,美国一家生物技术创新企业Seek Labs在杂志Nature Communications上发表了一篇题为“Annexing isothermal nucleotide amplification enables probe-guided amplification and direct detection at ambient temperature”的文章。作者提出了一种新的等温扩增框架ANINA。ANINA设计了一条Annexing Probe(AP),AP可侵入目标双链DNA并把一个非常短的 probe-adjacent primer(PP) 招募到相邻位点,使原本不足以被RPA有效利用的短引物也能完成退火和延伸。ANINA通过AP将扩增与检测整合于单一冻干反应体系中,使反应可以在25°C甚至室温下完成,并直接进入侧向层析检测,非常适合作为低资源、现场化、无设备核酸检测的技术路线。 图片来源:Nature Communications 主要内容 ANINA方法将扩增与检测整合于单一冻干反应体系中,可在20–45°C的广泛温度范围内运行,且整个检测过程仅需5–30分钟。ANINA包含了三种寡核苷酸(图b),Annexing Probe(AP)带有3′聚合酶阻断,不能被延伸,长度足够支持重组酶加载,且通常带有5′检测标签。Probe-adjacent primer(PP)位于AP旁边,功能类似正向引物。Downstream primer(DP)位于下游,功能类似反向引物,可带有biotin、digoxigenin等检测标签。 AP先形成重组酶-单链结合蛋白复合物,侵入双链DNA并结合互补序列,形成局部开放结构。随后,靠近AP的PP即使很短,也能在这个局部开放区域附近更容易退火并被Bsu链置换聚合酶延伸。PP延伸会把不能延伸的AP挤走,并暴露互补链供DP退火,从而推动扩增循环。因此,AP通过空间邻近效应,把PP招募到一个本来不容易发生扩增的位置。ANINA在25°C下,使用短PP以及DP仍能实现高效且特异的扩增,其长度远低于传统重组酶系统通常支持的范围。 ANINA机制示意图 图片来源:Nature Communications RPA的痛点是引物设计不够灵活。RPA通常需要长度为30-36 nt的引物,长引物较难找到合适区域,比如在高变异病毒、短保守区或需要多重检测的场景中。并且,引物越长越容易出现非特异结合和引物间相互作用。 ANINA实验中AP可以显著降低对长引物的依赖。作者在WSSV VP19靶标上测试了不同长度的PP和DP。所有的反应均在25℃下进行30分钟。结果显示,当没有AP时,只有较长引物组合能产生弱或不稳定扩增(图b)。加入AP后,包括15 nt PP+20 nt DP在内的短引物组合也能稳定扩增。 作者把PP位置相对于AP进行移动,发现如果PP的5′端离AP太远,比如超过17个核苷酸以外,短DP的扩增效率会明显下降。而如果PP更短但仍保持AP邻近,扩增反而可以成功。这个结果说明,扩增效率主要由AP和PP的5′端空间距离决定,不只由引物长度决定。 AP可以显著降低RPA对长引物的依赖 图片来源:Nature Communications AP在扩增后可以与产物形成检测兼容的稳定复合物,使扩增产物可以直接进入终点检测,并可兼容侧向层析和实时荧光定量,而不需要探针酶切或CRISPR辅助反应。 在WSSV VP19实验中,使用FAM标记AP和biotin标记DP时,只有模板存在的反应在LFA试纸上出现条带,具有比较强的特异性。ANINA还可以实现多重侧向层析读出。作者使用digoxigenin和biotin标记不同DP,在一个反应中观察到两个独立LFA测试线,且没有明显交叉干扰(图d)。作者还使用WSSV gDNA梯度稀释方法评估了分析灵敏度。结果显示,PAGE和LFA均能可靠检测1–10 copies/reaction,对应attomolar级别灵敏度(图f)。这个检测是在25°C下完成的,证明了ANINA低温扩增的可行性。 ANINA还可以做实时荧光定量。作者在反应中加入EvaGreen等DNA插入染料,在qPCR仪上以39°C恒温 运行,不进行热循环,记录实时荧光曲线,称为 qANINA.结果显示,qANINA在10⁰–10⁶ copies/reaction范围内产生浓度依赖性扩增曲线,不同输入浓度的信号可在约3–8分钟内达到阈值,估算qANINA的有效倍增时间约14.5秒。这部分结果说明,ANINA也可以进入定量分子诊断场景。虽然需要荧光读数设备,但无需热循环,因此仪器需求可以大幅降低。 AP可实现对ANINA扩增子的直接端点检测 图片来源:Nature Communications 为了验证平台通用性,作者不仅检测WSSV,还把ANINA扩展到多类人类病原靶标,包括EBV(双链DNA病毒),RSV(单链RNA病毒)和淋病奈瑟菌。EBV和RSV使用人唾液作为背景基质,淋病奈瑟菌使用模拟尿液作为背景基质。结果显示,所有靶标都只在病原阳性样本中出现扩增和侧向层析信号,人源基质对照和无模板对照均无明显信号。 在EBV唾液基质灵敏度实验中,作者还将ANINA试剂冻干,用处理后的EBV-spiked saliva直接启动反应,PAGE和LFA均可在1–10 copies/reaction检出,仍然对应attomolar灵敏度。这说明ANINA是一个可扩展框架,可以覆盖DNA病毒、RNA病毒和细菌,并且能在复杂人源样本背景中保持特异性。 WSSV是白斑综合征病毒,是水产养殖尤其虾养殖中的重大病原。在自然暴露感染模型中,作者在感染后24和48小时采集虾的腹足和肌肉组织。作者把冻干ANINA试剂与一个2分钟无仪器组织提取流程结合,虾组织提取液直接加入冻干ANINA反应珠,在25°C或环境温度下反应30分钟,再直接稀释进优化检测缓冲液并上LFA试纸,总时间在45分钟以内。结果显示,ANINA检出了所有qPCR阳性样本,包括低至20 copies/μL的低病毒载量样本,且在未感染对照中没有假阳性(图d)。 无仪器的ANINA检测 图片来源:Nature Communications 总结与讨论 作者研发的ANINA是一种基于AP引导短引物招募的新型重组酶等温扩增框架。它通过AP打开目标双链DNA,并招募短PP完成退火和延伸,从而突破传统RPA对长引物和较高反应温度的依赖。实验显示,ANINA可在25°C下使用短至10 nt的PP和15 nt的DP完成特异扩增,并可在1–10 copies/reaction 水平实现LFA检测。 ANINA不仅可检测WSSV,也可扩展到EBV、RSV和淋病奈瑟菌等不同核酸类型病原。qANINA还能在39°C恒温下实现实时定量。在WSSV自然感染虾模型中,无设备工作流程可在45分钟内完成检测,并检出抗原快检漏掉的低病毒载量感染。 但这项研究也有一定的局限性。ANINA的AP、PP、DP的空间关系非常关键,新靶标需单独设计和验证,需要更广泛的设计工具和机制研究。文章虽然展示了多重LFA读出,但更高阶多重扩增仍未充分验证。其次,本文对EBV、RSV、淋病奈瑟菌主要使用加标人源基质样本,还需要在大规模真实临床样本进行验证。等温扩增普遍存在污染风险,标准污染控制实践仍然重要。最后,AP机制也仍需进一步结构解析。总之,ANINA用AP把短引物招募到目标位点,同时把扩增和检测连接起来,为低资源、现场化、无设备核酸检测提供了一条非常新颖的技术路线。 注:本文内容仅供行业动态参考,不构成任何投资建议或临床医疗决策依据。 |
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