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单分子荧光放大核心!一文读懂数字 ELISA 中多聚酶的构建与应用

2026-7-17 10:30| 发布者: 沙糖桔| 查看: 285| 评论: 0|来源: 小桔灯网|作者:净姐

摘要: 关注小桔灯网

传统的数字ELISA(dELISA)之所以能做到超高灵敏度,核心逻辑很简单——把单个待测分子隔离到数百万个微米级液滴里,一个一个数。这个思路在单指标检测上已经非常成熟,甚至已经商业化。

但一旦遇到“多重检测”——比如同时测5种、10种甚至更多蛋白标志物,问题就来了。

你每多测一个指标,需要的液滴总数就要相应增加,否则泊松噪声会严重拖累灵敏度。而现有的液滴生成和检测方式,很难在保持灵敏度的前提下,把通量做到足够高。

最近,来自宾夕法尼亚大学的研究团队在 Microsystems & Nanoengineering 上发表了一项新工作,给出了一套很有启发性的解决方案。



一、文献核心内容梳理


01


研究背景与现存痛点

数字酶联免疫(dELISA)凭借单分子分隔计数,检测灵敏度比传统 ELISA 提升千倍,可用于蛋白、胞外囊泡、病毒、肿瘤标志物超微量检测,是体外诊断前沿技术。 但现有技术存在两大难以突破的瓶颈: 1)多重检测与高通量无法兼顾:多靶点检测需要生成上亿个微液滴,传统微流控生成、读取速度极低,通量不足; 2)多编码微球荧光区分难:商用双色编码微球仅单波长激发,无法区分多组微球,同时强弱荧光信号动态范围差距大,易出现信号饱和 / 背景过高,分类准确率下降。


02


本文核心创新:XµMD 多重微滴超大通量检测器

团队搭建时域调制光流体 + HDR 高动态成像一体化微流控平台 XµMD,从硬件、光学、算法三层解决上述痛点:

(1)微流控硬件:并行化液滴生成与检测

  • 采用千足虫(Millipede)200 喷嘴并行液滴发生器,水油剪切批量生成 80 μm 单分散液滴,最高通量6×10⁶ 液滴 / 分钟,是流式细胞仪的 100 倍;

  • 后端搭配 76 条并行微流检测通道,超大视场同步采集流动液滴荧光。



(2)光学创新:时域编码三色激光 + HDR 分时成像

  • 蓝 / 绿激光搭载最长序列(MLS)时域调制,两种激光采用独立编码波形,激发微球上双色荧光染料;通过软件互相关算法拆分混合荧光信号,实现 5 组双色编码微球精准区分,分类准确率>99%;

  • 红光激光独立用于 HRP 荧光底物信号采集;相机采用HDR 高动态分时曝光:长曝光(41.5 ms)读取微球编码、短曝光(10 ms)采集酶促荧光,两套成像参数解耦,同时兼顾微球定量与单分子阳性信号识别。



(3)算法解码:把荧光解析压力从硬件转移至软件

整套信号解码依靠后端图像处理完成:

  • 图像校正、通道分割、一维荧光信号提取;

  • MLS 互相关匹配,计算液滴流速、定位微球位置;

  • 帧间微球追踪、多帧信号平均降低变异系数;

  • 串扰校正、质控过滤低质量信号,最终输出微球双色荧光强度,完成分组判读。



03


模型验证实验:基于 PolyHRP 单分子数字 ELISA

以链霉亲和素 - 多聚 HRP(Streptavidin-PolyHRP)构建单分子检测模型,验证平台 dELISA 检测能力:

  1. 微球表面共价偶联生物素二抗;

  2. 超高倍稀释 SA-PolyHRP,依靠泊松分布实现单分子随机结合微球;

  3. 微球与远红外荧光底物混合封装进液滴,HRP 催化底物生成荧光产物并锁在液滴内;

  4. HDR 模式下区分「含单个 PolyHRP 阳性液滴」与「无酶阴性液滴」;

  5. 对照实验证实:酶促荧光信号不会干扰微球双色编码,多重检测无信号串扰。



04


研究结论与应用前景

  1. 性能指标:600 万液滴 / 分钟通量,5 组编码微球分类精度>99%,可拓展至 9 重靶点检测;兼容<3 μm 小型微球,适配各类数字免疫体系;

  2. 对比优势:相较 Simoa 静态微孔板、流式多重检测,通量提升 10~100 倍,突破多重检测样本量限制;

  3. 应用场景:传染病标志物、肿瘤微量蛋白、胞外囊泡、神经损伤标志物临床样本高通量多重筛查;可拓展至滚环扩增 RCA、酪胺信号放大 TSA 等无液滴分子检测;

  4. 未来优化方向:增加荧光染料维度拓展更多重检测、优化微流控结构进一步提升通量、结合机器学习解析复杂分子图谱,服务精准医疗。



二、重点专题:文献中 PolyHRP 多聚辣根过氧化物酶实现方案


01


为什么单分子 dELISA 必须用 PolyHRP,不能用普通单体 HRP?

普通单个 HRP 催化底物荧光信号弱,单分子水平难以被相机捕捉; PolyHRP 是多 HRP 聚合复合物,单个分子携带数十~上百个 HRP 酶催化位点,一次结合即可产生指数级放大荧光信号,完美适配液滴单分子数字计数。


02


 商用 Streptavidin-PolyHRP 主流两种工业化制备方案(本文所用试剂底层工艺)

本文直接采购商品化 Streptavidin-PolyHRP80 复合物(Biosynth),行业通用聚合路线分两类:

方案 A:多聚赖氨酸骨架聚合(最常用,本文试剂采用该路线)

  • HRP 糖基活化:高碘酸钠氧化 HRP 表面甘露糖,生成醛基,保留酶催化活性;

  • 骨架交联聚合:以多聚赖氨酸为载体,侧链氨基与 HRP 醛基发生席夫反应,还原后稳定共价结合;调控投料比,1 条赖氨酸骨架固定约 80 个 HRP 单体,形成 PolyHRP80 多聚簇;

  • 纯化:分子筛过滤去除游离单体 HRP,收集高分子量多聚体;

  • 偶联链霉亲和素:双功能交联剂将 1 分子链霉亲和素共价连接至 PolyHRP 簇,得到成品 SA-PolyHRP。

方案 B:葡聚糖骨架聚合(超高负载版本)

  • 线性葡聚糖修饰巯基作为中心载体;

  • 马来酰亚胺活化 HRP,与葡聚糖巯基一锅法交联,单个葡聚糖结合上百个 HRP;

  • 葡聚糖末端偶联链霉亲和素,完成复合物制备。


03


无载体自交联工艺(高端试剂升级路线)

不引入葡聚糖 / 多聚赖氨酸外源载体,通过 H₂O₂诱导 HRP 酪氨酸自由基交联,HRP 单体直接互相连接形成纯酶多聚体;优势是分子尺寸更小、空间位阻低,微球单分子结合效率更高。


04


本文实验如何利用 PolyHRP 实现单分子检测(实操流程)

  1. 固相载体构建:羧基双色编码微球共价偶联生物素化二抗;

  2. 单分子可控结合:SA-PolyHRP 按 1:500000 极限稀释,泊松分布下绝大多数微球无酶,少量仅结合单个 PolyHRP 复合物;

  3. 封闭洗涤:BSA 封闭缓冲液阻断非特异性吸附,离心洗去游离 PolyHRP;

  4. 液滴分隔放大:微球与荧光底物混合,微流控封装为独立液滴,PolyHRP 多酶位点持续催化底物生成荧光;

  5. 平台判读:XµMD 系统分时成像,通过荧光阈值区分单分子阳性液滴,完成超灵敏数字免疫定量。


参考文献

Atiyas, Y., Siedlik, M.J., Yang, S.J. et al. Combining time domain modulation optofluidics and high dynamic range imaging for multiplexed, high throughput digital droplet assays. Microsyst Nanoeng 11, 93 (2025). https://doi.org/10.1038/s41378-025-00918-2


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注:本文内容仅供行业动态参考,不构成任何投资建议或临床医疗决策依据。

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