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超高特异性的SE-SPTM-PCR或可使miRNA液体活检起死回生

2026-7-6 11:05| 发布者: 沙糖桔| 查看: 243| 评论: 0|来源: 小桔灯网|作者:动力彩虹

摘要: 作者提出的SE-SPTM-PCR为miRNA液体活检提供了一套系统性解决方案。

前言



miRNA是液体活检中非常有潜力的一类生物标志物。它们长度短,约22 nt,广泛存在于血浆、尿液、唾液等体液中,并且可以通过蛋白复合物或细胞外囊泡保护而相对稳定。许多肿瘤、感染、代谢疾病中,都报道过特异性miRNA表达异常。理论上,miRNA非常适合用于早期诊断、疗效监测和疾病风险分层。但现实中,miRNA液体活检的临床转化一直不成功。miRNA短、丰度低、同源家族之间序列高度相似,而且样本中可能存在背景核酸和抑制物。传统stem-loop RT-qPCR是常用金标准,但在短序列miRNA检测中仍然存在非特异扩增、假阳性和低丰度靶标敏感性不足等问题。


近日,来自厦门大学及其他研究机构和医院共同在杂志Nature Communications 上发表了一篇题为“A selective enrichment and specific probe terminal mediated strategy for highly sensitive detection of microRNAs”的文章。作者提出了一种名为SE-SPTM-PCR的miRNA检测平台。首先通过LNA修饰捕获探针和磁珠进行选择性富集(SE),从复杂体液中捕获目标miRNA。然后进行特异性探针末端介导RT-qPCR(SPTM-PCR),通过重新设计探针和引物,使扩增阶段也具备更强的miRNA序列识别能力。结果显示,该平台相较传统stem-loop RT-qPCR灵敏度提升约100倍,并显著改善多个miRNA标志物的临床检测表现。


图片来源:Nature Communications




主要内容


SE-SPTM-PCR的整体设计


SE-SPTM-PCR的整体原理图如下图所示。该检测系统采用三重筛选设计,确保了整个检测过程的特异性。


首先是选择性富集(SE)。将LNA修饰的miRNA捕获探针固定在链霉亲和素磁珠上,用来从血浆或血清裂解液中捕获目标miRNA。LNA修饰提高了探针与短miRNA的结合亲和力和识别能力。第二层筛选是在反转录阶段的3′端识别。如果相似miRNA在stem-loop primer结合区域存在错配,则反转录效率会下降甚至失败。但如果错配位于非互补区域,则可能仍会被反转录。也就是说,反转录阶段可以过滤一部分3′端差异明显的相似miRNA。最后一层筛选是在SPTM-PCR扩增阶段的5′端识别。作者重新设计了荧光探针,在探针3′端加入miRNA特异性识别序列,让荧光探针本身参与目标序列判别。

生物液体样本中miRNA检测的SE-SPTM-PCR系统示意图。图片来源:Nature Communications


选择性富集(SE)


作者用LNA修饰捕获探针与磁珠结合,形成DNA-SAMB捕获体系,然后在血浆或血清样本中选择性捕获目标miRNA。


作者将目标miRNA、双链DNA、单链DNA、长链RNA和无关miRNA放入体系中,结果显示选择性富集方法可以回收约63.12%的目标miRNA,而对背景核酸的回收均低于8%。无关双链DNA约2.43%、单链DNA约0.96%、长RNA约7.25%、无关miRNA约0.18%。作者还测试了与目标miRNA只差1–3个碱基的相似miRNA。结果显示,选择性富集后,目标miRNA的Cq基本不变,而突变/相似miRNA的Cq明显后移,且错配碱基越多,Cq后移越明显(下图b)。

选择性富集的性能验证。图片来源:Nature Communications


SPTM-PCR具有极高的特异性


传统stem-loop RT-qPCR出现非特异扩增的机制是,stem-loop primer和上游引物的3′端可能存在局部互补,从而形成引物-引物相互作用并产生非特异产物并可能被错误读取为阳性信号。为了解决这个问题,作者将miRNA特异性识别序列加入探针3′端。如果扩增产物来自非特异引物相互作用,探针就不能有效匹配。


研究结果表明,在46个不含模板的水样本中,SPTM-PCR没有出现可检测的非特异扩增,而商用ABI stem-loop RT-qPCR在12个样本中有4个出现假阳性信号,假阳性比例达到33.3%(图e和f)。作者还进一步在20份小鼠血浆和20份健康人血浆核酸提取物中验证,传统方法在复杂生物基质中几乎普遍出现非特异扩增,而SPTM-PCR仍保持无假阳性信号。

SPTM-PCR具有非常高的检测特异性。图片来源:Nature Communications


SE-SPTM-PCR系统具有极高的灵敏度,比传统方法高约100倍


作者随后将选择性富集与SPTM-PCR组合成完整的SE-SPTM-PCR系统。从血样中捕获目标miRNA,洗脱后反转录,再把全部cDNA输入qPCR扩增。在人工合成miRNA的梯度稀释实验中,SE-SPTM-PCR可检测到10³ copies/mL水平。在HCMV感染细胞培养上清掺入健康血浆的实验中,与传统方法相比,SE-SPTM-PCR表现出约100倍的更高灵敏度(如下图)。作者估计,在不同miRNA检测体系中,实际灵敏度提升可能在 40倍至10,000倍 之间,取决于具体靶标、背景干扰和试剂设计。

SE-SPTM-PCR高灵敏度检测系统。图片来源:Nature Communications


SE-SPTM-PCR平台在临床样本上的应用

作者首先选择结直肠癌作为人源miRNA液体活检模型,检测具有核心诊断价值的hsa-miR-92a-3p。作者用年龄和性别匹配的48例结直肠癌患者与48例健康对照血清样本,比较两种传统检测方案和SE-SPTM-PCR。结果显示,两种传统方案中,hsa-miR-92a-3p在CRC与健康人之间虽有显著差异,但AUC仅分别为0.72和0.80。SE-SPTM-PCR的AUC达到0.85。


作者检测的第二个临床应用场景是造血干细胞移植后HCMV再激活。作者检测了32例HCMV DNA阳性和32例HCMV DNA阴性造血干细胞移植患者血浆样本。传统miRNA检测无法有效区分DNA阳性和阴性患者,而SE-SPTM-PCR可以显著区分两组,hcmv-miR-US25-1-5p检测AUC达到 0.96,且HCMV DNA载量与miRNA水平呈强正相关。


第三个应用场景是鼻咽癌。EBV DNA已经是鼻咽癌筛查和监测中的重要标志物之一,EBV miRNA ebv-miR-BART7-3p、ebv-miR-BART2-5p和ebv-miR-BART3-3p也被大量研究。在40例鼻咽癌患者和40例健康对照血浆样本中,SE-SPTM-PCR在健康对照中几乎没有非特异信号,鼻咽癌患者中则出现清晰阳性。三种EBV miRNA在SE-SPTM-PCR体系下均达到近乎完美的诊断表现,AUC均为1.0,表现出极强区分能力(如下图)。

SE-SPTM-PCR检测EBV miRNA的诊断性能评估。图片来源:Nature Communications


总结与讨论



作者提出的SE-SPTM-PCR为miRNA液体活检提供了一套系统性解决方案。它通过LNA捕获探针和磁珠实现目标miRNA选择性富集,再通过SPTM-PCR重构探针末端识别,提高扩增阶段特异性,消除传统stem-loop RT-qPCR中的非特异扩增。该平台相较传统方法灵敏度提升约100倍,并在结直肠癌、HCMV再激活和鼻咽癌三个临床场景中显著改善miRNA检测性能。


这项研究也存在一定的局限性。首先,临床样本量不大,部分队列以晚期病例为主,不能直接推断早筛性能。研究主要是病例-对照设计,距离真实筛查场景、前瞻性队列和多中心验证仍有距离。其次,SE-SPTM-PCR虽然灵敏特异,但流程比普通RT-qPCR更复杂,需要验证自动化、批间一致性、成本和多重检测能力。最后,miRNA本身仍可能受溶血、样本处理、外泌体/蛋白结合状态和个体生理差异影响,分析前处理标准化非常关键。总之,SE-SPTM-PCR为低丰度、高同源、复杂背景中的miRNA检测提供了一条很有潜力的技术路线。对于未来肿瘤早筛、病毒感染监测和个体化治疗随访,这类方法值得继续关注和验证。


注:本文内容仅供行业动态参考,不构成任何投资建议或临床医疗决策依据。

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